具体描述
《细胞生物学实验》为高等学校细胞生物学实验教学用书。内容涉及细胞膜的特性，细胞器的分离，细胞骨架成分的观察，细胞成分的化学测定，染色体标本的制备与分析，放射性同位素在细胞生物学中的应用，细胞生理，细胞免疫，细胞电泳，细胞培养，细胞融合，细胞的遗传转化，显微镜，显微摄影及电镜技术等方面共54个实验。《细胞生物学实验》分为两部分，前26个实验为小实验性质，主要用于各类院校生物学基础课程细胞生物学实验之用。后28个实验为大实验性质，专门用于细胞生物学专业课程及相关专业硕士生的专业技术训练。《细胞生物学实验》除了用于实验教学之外，还可供有关科研人员参考。
这本《细胞生物学实验》是一部面向初学者和研究生的系统性学习教材，主要围绕细胞的基本结构与功能展开。内容涵盖了从细胞膜到细胞核，再到各种细胞器的详细介绍，帮助读者全面理解细胞组织的组成及其各自的作用。书中通过大量图示和实验案例，使复杂的生物过程变得直观易懂。每一章节都紧密结合实验操作，提供具体步骤和注意事项，这对于希望在实验室环境下进行学习或实际操作的重要性尤为突出。 书中的理论内容详细探讨了细胞信号传递、蛋白质合成与运输、细胞分裂机制等核心主题，并通过真实的实验案例帮助读者掌握相关方法和技巧。这部分章节不仅强调了理论知识，还注重实验技能的培养，例如如何进行细胞培养、染色技术以及观察细胞形态变化。此外，书中还详细讲解了不同组织类型细胞的特点和功能，如肌肉细胞、神经元与平滑肌细胞的特异性特征等，使读者能够深入理解各种细胞类型在生理过程中的重要作用。 实验部分则提供了丰富的实验设计方案，包括从细胞培养到显微镜观察、染色方法以及数据记录技巧。这些实用内容帮助读者掌握实验操作流程和注意事项，确保实验结果的可靠性与准确性。书中特别强调实验中的安全措施和数据分析方法，使学生能够在真实实验环境中独立思考和解决问题。 总体而言，这本《细胞生物学实验》不仅是对基础知识的系统梳理，更是一份充满实践性的学习资料，适合希望深入探索细胞科学的学生和科研人员。内容丰富、结构清晰，既兼顾理论深度，又强调操作技能，为读者提供了坚实的基础知识支持。通过书中详尽的实验指导与细致的理论讲解，帮助读者在学习过程中获得全面而深入的理解，逐步建立起对细胞生物学的全面掌握。 这本书特别注重连接理论与实践，使每一个章节都成为学生学习和操作的重要参考。在复杂的科学研究中，这类资源扮演了不可或缺的角色，为读者打开了解生命奥秘的大门，促进其专业能力的提升。
作者简介
目录信息
实验一 普通光学显微镜及其使用
实验二 特殊显微镜及其使用
Ⅰ、暗视场显微镜
Ⅱ、相差显微镜
Ⅲ、荧光显微镜
实验三 显微摄影术
实验四 电子显微镜的演示
实验五 细胞凝集反应
实验六 细胞膜的渗透性
实验七 巨噬细胞吞噬现象的观察
实验八 线粒体和液泡系的超活染色与观察
实验九 叶绿体的分离与荧光观察
实验十 线粒体的分离与观察
Ⅰ、大鼠肝线粒体的分离
Ⅱ、玉米线粒体的分离
实验十一 动物细胞微丝束的光学显微镜观察
实验十二 微管和中等纤维的免疫荧光观察
Ⅰ、动物细胞微管的观察
Ⅱ、动物细胞中等纤维的观察
Ⅲ、植物细胞微管的观察
实验十三 DNA的Feulgen染色法
实验十四 酸性磷酸酶的显示方法
实验十五 动物染色体标本的制备与观察
Ⅰ、小白鼠骨髓细胞染色体的制备方法
Ⅱ、黑斑蛙或蟾蜍骨髓细胞染色体标本的制备
实验十六 植物染色体标本的制备与观察
实验十七 染色体核仁组成区的银染色法
实验十八 减数分裂压片标本制备与观察
实验十九 联会复合体的染色与观察
实验二十 动物细胞培养
Ⅰ、原代细胞培养
Ⅱ、传代细胞培养与观察
实验二十一植物组织培养
实验二十二植物原生质体的分离和培养
实验二十三细胞电融合方法
实验二十四显微放射自显影技术
实验二十五细胞电泳
实验二十六类坏死的处理及死、活细胞鉴别
实验二十七透射电镜样品的制备与观察
Ⅰ、组织的固定和包埋
Ⅱ、支持膜的制作
Ⅲ、玻璃刀的制作
Ⅳ、包埋块的修正
Ⅴ、切片
Ⅵ、切片的染色
Ⅶ、透射电镜样品的观察
实验二十八扫描电镜样品的制备与观察
实验二十九电镜酶化学技术
Ⅰ、三磷酸腺苷酶
Ⅱ、酸性磷酸酶
实验三十 细胞器的分离
实验三十一膜蛋白质的分离
实验三十二脂质体的制备
实验三十三荧光标记技术
实验三十四免疫胶体金技术
实验三十五MAT法检测化学药物对体外培养细胞增殖及存活的影响
实验三十六腹腔巨噬细胞吞噬功能检测方法
实验三十七改良的空斑形成细胞测定法
实验三十八T淋巴细胞玫瑰花结实验
实验三十九3H标记化合物研究细胞内DNA和RNA的合成
实验四十 3H标记膜片法测定细胞s期的DNA复制
实验四十一3H标记化合物研究细胞内DNA、RNA和蛋白质代谢的动态过程
实验四十二用32P—磷酸氢二钠研究细胞内ATP代谢的动态过程
实验四十三放射免疫测定法
实验四十四人体染色体组型分析与分带技术
Ⅰ、微量全血培养
Ⅱ、人淋巴细胞染色体标本的制作
Ⅲ、人类体细胞染色体组型分析
Ⅳ、人类染色体G带显示法
实验四十五人体姊妹染色单体区分染色法
实验四十六植物染色体组型分析与分带技术
Ⅰ、植物染色体标本制备的去壁低渗法
Ⅱ、植物染色体组型分析方法
Ⅲ、植物染色体Giemsa C—带技术
Ⅳ、植物染色体Giemsa N—带技术
Ⅴ、植物染色体Giemsa G—带技术
实验四十七 杂交瘤技术
实验四十八 哺乳类细胞中早熟染色体凝集的诱导和观察
实验四十九 哺乳动物早期胚胎细胞的活体观察及体外培养技术
实验五十 植物细胞的悬浮培养
实验五十一 植物原生质体融合与体细胞杂交
Ⅰ、聚乙二醇法诱导原生质体融合
Ⅱ、供体一受体原生质体融合与胞质杂种的形成
实验五十二质粒DNA的快速提取
实验五十三用根癌农杆菌介导植物细胞的遗传转化
实验五十四植物细胞免疫荧光原位杂交
· · · · · · (收起)
实验二 特殊显微镜及其使用
Ⅰ、暗视场显微镜
Ⅱ、相差显微镜
Ⅲ、荧光显微镜
实验三 显微摄影术
实验四 电子显微镜的演示
实验五 细胞凝集反应
实验六 细胞膜的渗透性
实验七 巨噬细胞吞噬现象的观察
实验八 线粒体和液泡系的超活染色与观察
实验九 叶绿体的分离与荧光观察
实验十 线粒体的分离与观察
Ⅰ、大鼠肝线粒体的分离
Ⅱ、玉米线粒体的分离
实验十一 动物细胞微丝束的光学显微镜观察
实验十二 微管和中等纤维的免疫荧光观察
Ⅰ、动物细胞微管的观察
Ⅱ、动物细胞中等纤维的观察
Ⅲ、植物细胞微管的观察
实验十三 DNA的Feulgen染色法
实验十四 酸性磷酸酶的显示方法
实验十五 动物染色体标本的制备与观察
Ⅰ、小白鼠骨髓细胞染色体的制备方法
Ⅱ、黑斑蛙或蟾蜍骨髓细胞染色体标本的制备
实验十六 植物染色体标本的制备与观察
实验十七 染色体核仁组成区的银染色法
实验十八 减数分裂压片标本制备与观察
实验十九 联会复合体的染色与观察
实验二十 动物细胞培养
Ⅰ、原代细胞培养
Ⅱ、传代细胞培养与观察
实验二十一植物组织培养
实验二十二植物原生质体的分离和培养
实验二十三细胞电融合方法
实验二十四显微放射自显影技术
实验二十五细胞电泳
实验二十六类坏死的处理及死、活细胞鉴别
实验二十七透射电镜样品的制备与观察
Ⅰ、组织的固定和包埋
Ⅱ、支持膜的制作
Ⅲ、玻璃刀的制作
Ⅳ、包埋块的修正
Ⅴ、切片
Ⅵ、切片的染色
Ⅶ、透射电镜样品的观察
实验二十八扫描电镜样品的制备与观察
实验二十九电镜酶化学技术
Ⅰ、三磷酸腺苷酶
Ⅱ、酸性磷酸酶
实验三十 细胞器的分离
实验三十一膜蛋白质的分离
实验三十二脂质体的制备
实验三十三荧光标记技术
实验三十四免疫胶体金技术
实验三十五MAT法检测化学药物对体外培养细胞增殖及存活的影响
实验三十六腹腔巨噬细胞吞噬功能检测方法
实验三十七改良的空斑形成细胞测定法
实验三十八T淋巴细胞玫瑰花结实验
实验三十九3H标记化合物研究细胞内DNA和RNA的合成
实验四十 3H标记膜片法测定细胞s期的DNA复制
实验四十一3H标记化合物研究细胞内DNA、RNA和蛋白质代谢的动态过程
实验四十二用32P—磷酸氢二钠研究细胞内ATP代谢的动态过程
实验四十三放射免疫测定法
实验四十四人体染色体组型分析与分带技术
Ⅰ、微量全血培养
Ⅱ、人淋巴细胞染色体标本的制作
Ⅲ、人类体细胞染色体组型分析
Ⅳ、人类染色体G带显示法
实验四十五人体姊妹染色单体区分染色法
实验四十六植物染色体组型分析与分带技术
Ⅰ、植物染色体标本制备的去壁低渗法
Ⅱ、植物染色体组型分析方法
Ⅲ、植物染色体Giemsa C—带技术
Ⅳ、植物染色体Giemsa N—带技术
Ⅴ、植物染色体Giemsa G—带技术
实验四十七 杂交瘤技术
实验四十八 哺乳类细胞中早熟染色体凝集的诱导和观察
实验四十九 哺乳动物早期胚胎细胞的活体观察及体外培养技术
实验五十 植物细胞的悬浮培养
实验五十一 植物原生质体融合与体细胞杂交
Ⅰ、聚乙二醇法诱导原生质体融合
Ⅱ、供体一受体原生质体融合与胞质杂种的形成
实验五十二质粒DNA的快速提取
实验五十三用根癌农杆菌介导植物细胞的遗传转化
实验五十四植物细胞免疫荧光原位杂交
· · · · · · (收起)
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